搜索
高级检索
高级搜索
书       名 :
著       者 :
出  版  社 :
I  S  B  N:
出版时间 :
无库存
核磁共振成像试剂的合成及其医学应用
0.00     定价 ¥ 138.00
泸西县图书馆
此书还可采购1本,持证读者免费借回家
  • ISBN:
    9787030712257
  • 作      者:
    杨仕平
  • 出 版 社 :
    科学出版社
  • 出版日期:
    2022-01-01
收藏
荐购
精彩书摘
第1章 基本概念和理论
  磁共振成像(magnetic resonance imaging,MRI)是根据生物体磁性核(氢核)在磁场中的表现特性成像的高新技术。近年来,它的应用不仅在医学临床方面得到充分的展示,其在食品科学、石油化学、微生物的检验、分子影像等方面也得到了极大的发展。磁共振成像的物理基础为核磁共振(nuclear magnetic resonance,NMR)理论,也就是指物质的磁性和外部的磁场发生共振的现象,也可以说是低能量电磁波(射频波)与既有角动量又有磁矩的核系统在外磁场中相互作用所表现出的共振特性。这里*先介绍 MRI的发展历程。
  1.1 磁共振成像的发展
  1946年,美国哈佛大学的 Purcell和斯坦福大学的 Bloch各自独立地发现了核磁共振现象[1],由于这一发现在物理、化学上具有重大意义,两人获得了 1952年的诺贝尔物理学奖。此后,核磁共振技术应用范围不断拓展,在物理、化学、生物医学、地质、石油化工、材料科学等众多领域得到了迅速的发展。 1971年美国纽约州立大学的 Damadian*先将 MRI用于临床医学[2]。他对植入恶性肿瘤细胞的大鼠进行了 NMR实验,发现正常组织和恶性组织的 NMR信号明显不同。他还观察到,在受激组织的偏转磁矩恢复至稳定状态的过程中,它会发出两类不同信号,这就是以后命名的纵向弛豫时间(T1)、横向弛豫时间(T2)。因此,他认为,由于水的特殊结构,使其具有很强的磁偶极子表现和 NMR信号,因而利用 NMR对生物体进行成像是可能的。并从 1970年开始,他与同事经过 7年的艰苦努力,终于建成了人类历史上第一台全身磁共振成像装置,并在 1977年 7月 3日,他们取得了第一幅横轴位质子密度加权像,从而宣告一个全新的成像领域就要诞生了。 1973年 Lauterbur通过梯度磁场,用逐点地诱发磁共振信号,获得了两个充水试管的第一幅核磁共振图像,即获得水模型的图像,标志着核磁共振成像的出现[3]。1980年 Hawkes等证实了 MRI多平面成像的优点,并*次报道了用 MRI检查颅内病变的结果[4],同年商品 MRI机出售。随后,这一新的技术迅速在各个国家的医疗中心和大医院应用起来,成为*先进的影像诊断技术之一。目前这一技术仍然处于高速发展之中,2003年的诺贝尔生理学或医学奖就授予了美国的 Lauterbur和英国的 Mansfield以表彰他们在核磁共振成像技术领域的突破性成就。
  1.2 磁共振成像的原理与弛豫率
  核磁共振也称磁共振,是物质原子核磁矩在外磁场的作用下发生了能级分裂,并在外加射频磁场的能量条件下产生的能级跃迁的核物理现象。这个现象的发现*初应用于波谱学,使人们在探索物质微观结构时增加了一个重要的研究技术,从而诞生了核磁共振这一新兴学科[5]。磁共振成像的原理就是做自旋运动的原子核在外加磁场下被射频脉冲激发后会产生信号,该信号被捕捉检测后经电脑的进一步处理可转化为屏幕上显示的图像[6,7]。目前多组织的 MRI信号源*选为氢原子核,因为它对磁共振灵敏度比较高,信号也很强。因为人体组织中含有大量的水和碳氢化合物,水的质量占人体质量的 70%,氢原子遍布人的全身,所以氢核的核磁共振灵敏度和信号强度远高于其他原子核[8]。氢原子核带有正电,且会进行自旋,它的自旋轴的排列一般情况下是没有规律的,氢质子运动方向杂乱无章,氢质子自旋产生的磁矩相互之间会抵消,使人体宏观的磁矩为 0。但是它的自旋轴在外加磁场的作用下可以逐渐过渡到有序状态,并*终达到平衡。此时,若核自旋系统受到外部的射频(RF)脉冲的激发,就会发生共振效应,一些低能量的质子吸收脉冲传递的能量,从而产生了两种运动,分别是旋转自旋运动和绕磁场轴向运动,它们综合在一起被称为拉莫尔(Larmor)进动,进动频率也就是 Larmor频率。而当 RF脉冲停止时,外界刺激消失,被激发的质子会逐渐恢复正常,变回原来的平衡状态,这个过程就被称为弛豫,质子在恢复到之前的平衡状态时,会伴随着能量的释放,而能量的主要释放形式为射电信号,其频率混合与激励波相同,这种现象就是核磁共振。接收器捕捉到了这个电波信号,经过检测和处理后就成为我们看到的 MR图像[9]。
  在停止 RF脉冲后,质子的磁矩恢复到之前的平衡状态,这个过程叫作弛豫,而此过程花费的时间则被称为弛豫时间。弛豫可在纵向和横向两个方向上测量,并分别设置了时间常数 T1和 T2来表征。通常将纵向磁化强度(Mz)的恢复称为纵向弛豫(longitudinal relaxation),它是自旋 -晶格弛豫的反映,T1就是磁化方向上的磁化矢量恢复到其原始幅度的 63%所需的时间;而横向磁化强度(Mxy)的消失过程就是横向弛豫(transverse relaxation),它是自旋-自旋弛豫的反映,T2表示垂直于磁场平面的磁化矢量减少到 37%的净信号所需的时间(图 1-1)。而 T1和 T2的倒数就是弛豫率(relaxivity),分别用 r1和 r2来表示。T1和 T2的单位是时间(s),而 r1和 r2的单位则是以摩尔浓度与秒的乘积的倒数[L/(mol . s)]来表示。由于浓度不同时会得到不同的 T1和 T2,因此,要将浓度因素的影响考虑进来。磁共振成像用于生物医学的诊断和治疗时,一般使用加权像(weighted image,WI)将磁共振信号可视化输出[10]。由于 T1和 T2是时间参数,从数字辨别信号的差异不够方便和直观,
  图1-1 磁共振成像原理(a)自旋与磁场平行或反平行,并在拉莫尔频率(ω0)下进动;(b)感应射频脉冲后,自旋的磁化强度发生变化;激发态的自旋采取 T1弛豫(c)和 T2弛豫(d)的弛豫过程
  透过影像可以比利用时间参数更容易判断疾病等的状况,因此,将 T1与 T2转换成影像参数就变得非常有必要。由于氢原子对于核磁共振现象具有高度的灵敏度,而人体各部位器官与组织又有高度的水含量,因此水分子的信号即成为磁共振成像所检测的主要对象。磁共振成像的图像加权分为 T1加权像(T1-WI)和 T2加权像(T2-WI)两种,如主要突出各组织成分中 T1之间差异的图像即 T1加权像,突出 T2权重的图像即 T2加权像[10]。在 T1加权像中,若组织或器官的 T1短,则磁共振信号强度强,图像会变得白亮;若组织或器官的 T1长,则磁共振信号强度弱,图像就会变得黑暗;而在 T2加权像中,若组织或器官 T2长,则磁共振信号强度强,图像就变得白亮;如果组织或器官 T2短,则磁共振信号强度弱,图像则变得黑暗。综上可以得出结论:生物体内部凡是有水分子存在的空间,就能通过磁共振造影形成加权像,由于生物体内组织的结构不同,弛豫时间及释放的能量也就不同,从而加权拟合后形成黑白灰阶度不同的磁共振图像。
  1.3 弛豫过程[5]
  在磁共振成像中,弛豫(relaxation)是指原子核发生共振且处在高能状态时,当射频脉冲停止后,将迅速恢复到原来的低能状态。
  质子系统在外磁场中,产生一纵向磁化强度矢量 M0,这一状态不随时间变化,称为平稳状态。在射频脉冲的作用下,M0的方向就要偏离外磁场方向,此时,质子系统处于非平衡状态,当射频脉冲停止后,M0是不能长久保持偏离外磁场(纵向)这种非平衡状态,而是要逐渐恢复到原来的平衡状态,将从射频脉冲吸收的能量释放出来,这个恢复过程称为弛豫过程。它是一个能量转换过程,需要一定的时间,反映了质子系统中质子之间和质子与周围环境之间的相互作用。 M0的整个恢复过程是较复杂的,但却是磁共振成像的关键部分,磁共振成像时受检组织的每一个质子都要经过反复的激发和弛豫过程。完成弛豫过程分两步进行,即 M0要恢复到*初平衡状态的 M0和横向磁化强度 Mxy要衰减到零,这两步是同时开始但独立完成的。
  1.3.1 纵向弛豫过程与纵向弛豫时间 T1
  以π/2脉冲为例,π/2在脉冲之后,质子系统的纵向磁化强度矢量 M0翻转到 xoy平面,所有质子以相同的相位(即同步、同方向、同速度)绕 z轴进动,在磁化强度翻转到 xoy平面后,射频脉冲立刻关闭。热力学的一个普通原理就是所有的系统趋向于自己*低的能态。因此,在关闭射频脉冲以后,将会发生两种情况:
  ①高能级质子将跃迁到*低能级; ②质子系统之间将出现相位差。关闭射频脉冲后这两个过程同时发生,但又相互独立。
  在射频脉冲的作用下,低能级质子吸收射频脉冲能量跃迁到高能级,射频脉冲停止后,处在高能级的质子不稳定,将跃迁到低能级,结果使处在低能级和高能级上的质子数又恢复到射频脉冲作用前的情况,其纵向磁化强度分量逐渐恢复到初始平衡状态的 M0。我们把 M0一旦受到射频脉冲激发,偏离平衡位置,产生纵向磁化强度分量 Mz和横向磁化强度分量 Mxy,并在射频脉冲停止后,Mz总是向 M0(M0的大小)恢复,直至恢复到射频脉冲作用前的 M0状态,这一过程称为纵向弛豫过程(longitudinal relaxation)。由于这个过程是质子与周围物质进行热交换,或者说质子将多余能量通过晶格扩散出去,使其从高能级跃迁到低能级,因此这一过程又称为自旋-晶格弛豫过程。对于 π/2翻转、π翻转和部分翻转来说,其纵向弛豫过程分别是 Mz从 0、.M0和 M0cosθ恢复到 M0的过程。这一过程进行的快慢取决于质子与周围环境之间的作用。图 1-2给出了由 4个质子组成系统的弛豫过程。图 1-2(a)表示*初平衡状态,4个质子均处于低能级,形成*初的纵向磁化强度矢量 M0;图 1-2(b)为 π/2脉冲激发后的非平衡状态,低能级和高能级质子数相等,此时纵向磁化强度为零;图 1-2(c)与(d)表示进行的纵向弛豫过程,在这一过程中纵向磁化强度逐渐恢复到*初情况。
  图1-2 4 个质子组成系统的纵向弛豫过程
  纵向磁化强度分量 Mz向平衡状态 M0恢复的速度与它们离开平衡位置的程度成正比,因此有
  (1-1)
  负号表示恢复;T1具有时间的量纲。对于π/2脉冲作用后,从式(1-1)可解得纵向磁化强度Mz的恢复表达式为:
  (1-2)
  式中,M0是射频脉冲作用前质子系统的纵向磁化强度矢量的大小;T1称为纵向弛豫时间(longitudinal relaxation time),简称 T1。
  式(1-2)给出了恢复过程中的任意时刻纵向磁化强度矢量的大小 Mz,说明 Mz是时间的指数增长函数,t的计时从射频脉冲停止开始。通常用 Mz由零恢复到 M0的 63%时所需要的时间来确定 T1,即纵向弛豫时间 T1为 Mz恢复到 0.63M0时所需要的时间(图 1-3),Mz随时间的恢复曲线又称为 T1恢复曲线。需特别注意的是,从 Mz(t)-t公式可以看出,Mz要恢复到 M0理论上需要的时间是无穷长,然而当 t=5 T1,纵向磁化强度矢量 Mz已经恢复了 99.33%,非常接近于 M0,因此在实际中我们用 T1表示 Mz恢复到它初始磁矢量 M0所需的时间。通常用 T1表示纵向弛豫过程的快慢,T1大反映了纵向弛豫过程进行得慢,T1小表明纵向弛豫过程进行得快。T1又称为自旋-晶格弛豫时间(spin-lattice relaxation time)。T1的大小取决于外磁场及质子与周围环境之间的相互作用(即组织的性质)。T1值一般以秒或毫秒为单位。
  图1-3 T1时间的确定
  纵向弛豫时间 T1是组织的固有特性,在外磁场给定后,不同生物组织其 T1值都有相应的固定值,但不同生物组织 T1值有很大的差异,如水的 T1为 3 s,人体中水的 T1约在 500 ms~1 s范围内,固体的 T1很大,几小时甚至几天。各种组织都有自己特定的 T1值,这正是核磁共振成像所需要的。
  外磁场 B0(B0的大小)对组织的纵向弛豫时间 T1也有影响,大多数组织的纵向弛豫
展开
目录
目录
前言
第1章基本概念和理论1
1.1磁共振成像的发展1
1.2磁共振成像的原理与弛豫率2
1.3弛豫过程3
1.3.1纵向弛豫过程与纵向弛豫时间T14
1.3.2横向弛豫过程与横向弛豫时间T2、T2*6
1.4Néel-Brownian弛豫9
1.5自由感应衰减(FID)信号11
1.5.1发射与接收线圈11
1.5.2自由感应衰减(FID)信号的确立11
1.6纵向磁化和T1对比13
1.6.1脉冲序列重复时间(TR)13
1.7组织的Tl对比(Tl加权)17
1.8横向磁化和T2对比19
1.8.1回波时间(TE)19
1.9组织T2*对比20
1.10磁共振成像造影剂23
参考文献26
第2章氧化锰T1造影剂29
2.1荧光分子标记的四氧化三锰T1造影剂的合成29
2.1.1合成思路29
2.1.2Mn3O4和Mn3O4@SiO2-NH2纳米粒子的合成与表征30
2.1.3多功能纳米造影剂Mn3O4@SiO2(RBITC)-FA的合成与表征32
2.1.4细胞毒性实验34
2.1.5流式细胞实验36
2.1.6荧光共聚焦成像实验38
2.1.7细胞磁共振成像实验40
2.1.8小结41
2.2叶酸修饰的具有靶向功能的Mn3O4纳米粒子的制备及其在核磁共振成像中的应用42
2.2.1Mn3O4纳米粒子的合成与表征43
2.2.2Mn3O4纳米粒子的稳定性46
2.2.3溶液中的磁共振成像47
2.2.4细胞毒性测试49
2.2.5细胞磁共振成像49
2.2.6活体的核磁共振成像50
2.2.7活体内的组织分布51
2.2.8小结51
参考文献52
第3章四氧化三铁造影剂的开发55
3.1响应型Fe3O4-ZIF-8核磁共振造影剂的研究55
3.1.1油溶性Fe3O4纳米粒子的合成与表征56
3.1.2水溶性Fe3O4-DHCA纳米粒子的合成与表征57
3.1.3水溶性Fe3O4-DHCA纳米粒子在磁滞回线中的研究59
3.1.4水溶性Fe3O4-DHCA纳米粒子的MRI性能59
3.1.5水溶性Fe3O4-ZIF-8组装体的合成与表征60
3.1.6水溶性Fe3O4-ZIF-8组装体的磁滞回线63
3.1.7水溶性Fe3O4-ZIF-8组装体在核磁共振成像中的研究64
3.1.8水溶性Fe3O4-ZIF-8组装体在体外解组装实验中的研究65
3.1.9水溶性Fe3O4-ZIF-8组装体的细胞毒性实验研究71
3.1.10水溶性Fe3O4-ZIF-8组装体在体内解组装实验中的研究72
3.1.11水溶性Fe3O4-ZIF-8组装体的活体毒性实验研究72
3.1.12活体MR成像实验研究73
3.1.13水溶性Fe3O4-ZIF-8组装体在小鼠体内各个组织中的分布情况研究74
3.1.14小结75
3.2通过开环聚合法表面改性Fe3O4多级结构纳米簇及其用于靶向磁共振成像的研究76
3.2.1Fe3O4与Fe3O4-NH2纳米簇的合成与表征77
3.2.2Fe3O4-FA纳米簇的合成与表征80
3.2.3Fe3O4及Fe3O4-NH2纳米簇的磁学性质研究82
3.2.4Fe3O4-NH2纳米簇的MRI实验83
3.2.5细胞毒性试验85
3.2.6细胞核磁共振成像实验85
3.2.7小结87
3.3普鲁士蓝修饰的Fe3O4纳米粒子的合成及在磁共振成像与光热治疗中的研究87
3.3.1Fe3O4和Fe3O4@PB纳米粒子的合成与表征88
3.3.2Fe3O4@PB纳米粒子的磁学性质92
3.3.3Fe3O4@PB纳米粒子的光热性质92
3.3.4Fe3O4@PB纳米粒子的毒性测试95
3.3.5Fe3O4@PB纳米粒子在细胞中的核磁成像95
3.3.6Fe3O4@PB纳米粒子的细胞光热测试96
3.3.7小结97
3.4水溶性硫醚聚合物配体修饰Fe3O4的研究97
3.4.1PTMP-PMAA-Fe3O4的制备和表征98
3.4.2细胞毒性实验100
3.4.3PTMP-PMAA-Fe3O4纳米粒子在核磁共振中的研究100
3.4.4小结103
3.5生物天然高分子修饰Fe3O4的研究103
3.5.1牛血清蛋白、聚谷氨酸以及海藻酸钠(SA)修饰四氧化三铁纳米粒子的制备和表征104
3.5.2细胞毒性实验105
3.5.3纳米粒子的核磁共振成像106
3.5.4小结110
参考文献111
第4章铁酸锰造影剂117
4.1水溶性的超顺磁PAMAM-MnFe2O4纳米结构的合成、应用及其在MRI上的应用117
4.1.1PAMAM-MnFe2O4纳米粒子的合成和表征118
4.1.2G4-MnFe2O4纳米粒子的磁性及其MRI应用123
4.1.3小结126
4.2水溶性的超顺磁TEG-MnFe2O4的合成、表征及其在MRI上的应用127
4.2.1MnFe2O4纳米粒子的合成和表征129
4.2.2MnFe2O4纳米粒子的磁性及横向弛豫率131
4.2.3细胞毒性分析133
4.2.4细胞内磁共振成像研究133
4.2.5动物体内磁共振成像研究134
4.2.6MnFe2O4纳米粒子在KM小鼠体内各器官的生物分布研究135
4.2.7小结137
参考文献137
第5章Fe@Fe3O4造影剂141
5.1核壳结构Fe@Fe3O4纳米粒子的合成及其在核磁共振成像与磁靶向光热治疗中的研究142
5.1.1油溶性和水溶性Fe@Fe3O4纳米粒子的合成与修饰142
5.1.2水溶性Fe@Fe3O4@PEG纳米粒子的磁性与弛豫145
5.1.3水溶性Fe@Fe3O4@PEG纳米粒子的光热性质研究146
5.1.4细胞毒性实验151
5.1.5动物体材料毒性实验152
5.1.6细胞光热实验152
5.1.7动物肿瘤光热治疗效果实验155
5.1.8Fe@Fe3O4@PEG纳米粒子磁靶向效果实验156
5.1.9活体磁靶向MRI效果实验159
5.1.10小鼠肿瘤组织切片分析160
5.1.11活体肿瘤磁靶向光热治疗实验161
5.1.12小结162
5.2Fe@Fe3O4纳米粒子在凋亡靶向磁共振成像和光热治疗中的研究163
5.2.1溶液中SPAAC反应确认164
5.2.2Fe@Fe3O4、Fe@Fe3O4PEG、Fe@Fe3O4-DPA-Zn及Fe@Fe3O4-FITC/DPA-Zn的合成与表征165
5.2.3纳米粒子溶液稳定性分析167
5.2.4细胞毒性实验168
5.2.5Fe@Fe3O4-DPA-Zn纳米粒子细胞层次凋亡靶向研究169
5.2.6Fe@Fe3O4-DPA-Zn纳米粒子活体层次凋亡靶向研究174
5.2.7活体光热治疗及肿瘤组织切片分析176
5.2.8小结178
5.3PEG修饰的Fe@Fe3Ge2核壳纳米粒子的制备及其在MRI/光热/光动力学治疗中的研究178
5.3.1油溶性Fe@Fe3Ge2纳米粒子的制备与表征179
5.3.2水溶性Fe@Fe3Ge2PEG的制备与表征180
5.3.3Fe@Fe3Ge2PEG的稳定性探究181
5.3.4Fe@Fe3Ge2PEG的溶液MRI实验181
5.3.5Fe@Fe3Ge2PEG的光热性质182
5.3.6Fe@Fe3Ge2PEG的单线态氧产生能力的研究184
5.3.7细胞光热/光动力学治疗190
5.3.8细胞光热治疗机理的探究192
5.3.9细胞光动力学治疗机理的探究193
5.3.10活体毒性实验195
5.3.11小鼠MR成像195
5.3.12小鼠光热/光动力学治疗实验196
5.3.13小结198
5.4RGD修饰的Fe@Fe3Ge2核壳纳米粒子的制备及其在MRI/光热/光动力学治疗中的研究198
5.4.1Fe@Fe3Ge2-RGD的制备与表征198
5.4.2细胞的靶向MRI研究199
5.4.3细胞光热/光动力学治疗实验200
5.5结论204
参考文献204
第6章其他造影剂208
6.1双亲性FePt纳米粒子的合成及细胞成像研究208
6.1.1FePt纳米粒子的XRD分析209
6.1.2不同表面活性剂作用下FePt的TEM分析209
6.1.3纳米粒子表面XPS分析211
6.1.4红外光谱分析212
6.1.5双亲性纳米粒子的溶解性照片213
6.1.6磁性表征和水溶液中的核磁共振成像213
6.1.7铁铂纳米粒子的细胞成像214
6.1.8纳米粒子的细胞毒性图215
6.1.9纳米粒子的细胞切片图216
6.1.10小结216
6.2水溶性Fe-Ni合金纳米粒子的合成、表征及其在MRI上的应用217
6.2.1Fe-Ni合金纳米粒子的性质表征217
6.2.2Fe-Ni@APAS@PEG纳米材料细胞毒性分析221
6.2.3Fe-Ni@APAS@PEG纳米粒子在MRI中的应用222
6.2.4小结224
6.3水溶性Fe-M(Ni,Co,Mn)-B合金纳米粒子的合成、表征及其在MRI上的应用225
6.3.1Fe-M(Ni,Co,Mn)-B纳米粒子的合成与表征226
6.3.2Fe-M(Ni,Co,Mn)-B纳米粒子的热处理和晶化过程232
6.3.3Fe-M(Ni,Co,Mn)-B样品在活体外的MRI应用234
6.3.4Fe-Co-B纳米样品的毒性分析236
6.3.5HeLa细胞对Fe-Co-B纳米样品的吞噬情况236
6.3.6Fe-Co-B纳米粒子在活体内的磁共振成像实验237
6.3.7Fe-Co-B纳米粒子在活体内的组织分布实验238
6.3.8Fe-Co-B纳米粒子在活体内的组织切片实验238
6.4小结239
参考文献239
第7章T1和T2造影剂244
7.1钆配合物标记的四氧化三铁T1、T2双模式造影剂的设计、合成及其在生物成像中的应用244
7.1.1Fe3O4和Fe3O4@SiO2-NH2纳米粒子的合成与表征246
7.1.2Fe3O4@SiO2(Gd-DTPA)-NH2纳米粒子的合成与表征247
7.1.3Fe3O4@SiO2(Gd-DTPA)-RGD纳米粒子的合成与表征250
7.1.4Fe3O4@SiO2(Gd-DTPA)-RGD纳米粒子的磁学性质表征251
7.1.5细胞毒性实验254
7.1.6细胞磁共振成像实验254
7.1.7活体磁共振成像实验257
7.1.8小结259
7.2Gd标记的Fe@Fe3O4纳米粒子用于T1-T2双模式MRI造影剂259
7.2.1材料的制备与表征261
7.2.2材料的应用265
7.2.3小结270
7.3镝配合物修饰的Mn3O4纳米粒子的制备及其在T1/T2双模式磁共振成像中的应用271
7.3.1Mn3O4@mSiO2-NH2纳米粒子的合成与表征271
展开
加入书架成功!
收藏图书成功!
我知道了(3)
发表书评
读者登录

温馨提示:请使用泸西县图书馆的读者帐号和密码进行登录

点击获取验证码
登录